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JNO-B(B)

JNOPTIC Filter JNO-B(B)

– Filter set for EGFP / FITC / Cy2 / AlexaFluor488
– Chroma Filter Model No. : 39002

JNO-B(B) Spectrum

JNO-B(B) Spectrum Chart
JNO-B(B) Spectrum Chart
FiltersType
AT480/30xEX
 AT505DCBS
AT535/40mEM

주요 형광 색소(Fluorochromes)와 스펙트럼 비교

* FITC VS JNO-B(B)

FITC VS JNO-B(B) spectrum chart
FITC VS JNO-B(B) spectrum chart

 * GFP VS JNO-B(B)

JNO-B(B) VS GFP spectrum chart
JNO-B(B) VS GFP spectrum chart

 * AlexaFluor488 VS JNO-B(B)

JNO-B(B) VS AlexaFluor 488
JNO-B(B) VS AlexaFluor 488

JNO-B(B)필터를 이용한 Sample Image 촬영

Fluorescence image taken using JNO-B(B)
Sample : bovine pulmonary artery endothelial cell, BPAEC Filter Set : JNO-B(B) Camera : AcquCAM 23GR2 C-mount adapter : 1X Lens : PlanApo60xWLSM
Fluorescence image taken using JNO-B(B)
Sample : bovine pulmonary artery endothelial cell, BPAEC Filter Set : JNO-B(B) Camera : AcquCAM 3G C-mount adapter : 1X Lens : PlanApo60xWLSM
Fluorescence image taken using JNO-B(B)
Sample : bovine pulmonary artery endothelial cell, BPAEC Filter Set : JNO-B(B) Camera : AcquCAM 5G C-mount adapter : 1X Lens : UPLNAPO40X

JNO-B(B)필터에 적합한 형광색소

  • Acridine Orange + DNA
  • Alexa Fluor 488™
  • Atto 488
  • Azami Green
  • BODIPY FL/pH7.2
  • Calcein
  • Calcium Green™-1
  • Cy2™
  • DiO
  • DyLight 488
  • EGFP
  • Emerald GFP
  • FAM
  • FITC
  • Fluo-4
  • GFP
  • LysoTracker Green/pH 5.2
  • MitoTracker Green FM/MeOH
  • mWasabi
  • Oregon Green™ 488
  • SYBR® Green I
  • SYTO 9/DNA
  • ZsGreen1

JNO-B(B) Spec

  • Typical Application(s) : Widefield Microscopy
  • Coating : Sputter/Hard Coated
  • Round excitation and emission filters mounted in anodized aluminum rings 2.3mm thick, up to 25mm in diameter (for standard sizes)
  • Rectangular dichroics up to 26x38mm, 1mm thick, to fit standard microscope manufacturer filter cubes (for standard sizes)

*** For filters larger than 25mm and dichroics larger than 26x38mm, please contact us for pricing. ( Tel. 02-3473-4188)

JNO-U(B)

– Filter set for DAPI / Hoechst / AlexaFluor350
– Chroma Filter Model No. : 39000

JNO-U(B) Spectrum

Spectra View for JNO-U(B)
Spectra View for JNO-U(B)
Filters Type
 AT375/28x EX
AT415DC BS
 AT460/50m EM

주요 형광 색소(Fluorochromes)와 스펙트럼 비교

* DAPI VS JNO-U(B)

DAPI VS JNO-U(B)
DAPI VS JNO-U(B)

* Hoechst VS JNO-U(B)

JNO-U(B) VS Hoechst
Spectrum Comparison by Wavelength JNO-U(B) vs Hoechst

 * AlexaFluor350 VS JNO-U(B)

JNO-U(B) vs AF350
Spectrum Comparison by Wavelength JNO-U(B) vs AF350

JNO-U(B)필터를 이용한 Sample Image 촬영

DAPI Sample : bovine pulmonary artery endothelial cell, BPAEC Camera : AcquCAM 23GR2, Filter Set : JNO-U(B) Objective lens : UPLNAPO40X, C-mount adapter : 1X
DAPI
Sample : bovine pulmonary artery endothelial cell, BPAEC
Camera : AcquCAM 23GR2, Filter Set : JNO-U(B)
Objective lens : UPLNAPO40X, C-mount adapter : 1X
DAPI, FITC, TRITC Sample : bovine pulmonary artery endothelial cell, BPAEC Camera : AcquCAM 23GR2, Filter Set : JNO-U(B),B(B),G(B) Objective lens : UPLNAPO40X, C-mount adapter : 1X (OLYMPUS) Above three images are merged and processed using JNO-ARM
DAPI, FITC, TRITC
Sample : bovine pulmonary artery endothelial cell, BPAEC
Camera : AcquCAM 23GR2, Filter Set : JNO-U(B),B(B),G(B)
Objective lens : UPLNAPO40X, C-mount adapter : 1X (OLYMPUS)
Above three images are merged and processed using JNO-ARM
DAPI, FITC, TRITC Sample : bovine pulmonary artery endothelial cell, BPAEC Camera : AcquCAM 3G, Filter Set : JNO-U(B),B(B),G(B) Objective lens : UPLNAPO40X, C-mount adapter : 1X Above three images are merged and processed using JNO-ARM
DAPI, FITC, TRITC
Sample : bovine pulmonary artery endothelial cell, BPAEC
Camera : AcquCAM 3G, Filter Set : JNO-U(B),B(B),G(B)
Objective lens : UPLNAPO40X, C-mount adapter : 1X
Above three images are merged and processed using JNO-ARM

JNO-U(B) 필터에 적합한 형광색소

  • Alexa Fluor 350™
  • Biosearch Blue
  • Coumarin
  • DAPI
  • DyLight 350
  • Hoechst 33258
  • LysoTracker Blue/MeOH

JNO-U(B) Spec

  • Typical Application(s) : Widefield Microscopy
  • Coating : Sputter/Hard Coated
  • Round excitation and emission filters mounted in anodized aluminum rings 2.3mm thick, up to 25mm in diameter (for standard sizes)
  • Rectangular dichroics up to 26x38mm, 1mm thick, to fit standard microscope manufacturer filter cubes (for standard sizes)

*** For filters larger than 25mm and dichroics larger than *** 26x38mm, please contact us for pricing.

pE-340fura

The pE-340fura offers:

CoolLED pE-340fura 

Utilising the successful pE-300 Series platform, the pE-340fura is a bespoke LED Illuminator for Fura-2 ratiometric calcium imaging, which also supports everyday fluorescence microscopy in a compact and affordable package.

The 340nm and 380nm LED illumination system provides the optimum excitation wavelengths for Fura-2-based calcium imaging allowing high-precision, stable, high-throughput imaging with video-rate time resolution.

340nm Excitation 380nm Excitation

The images above show a field of cardiac myocytes (heart cells).  The cells were loaded with Fura-2 using standard conditions (i.e. incubation with 2 micromolar Fura-2 acetoxymethyl ester for 30 minutes, followed by an additional 30 minutes for de-esterification.

Images were obtained by Martin Bootman and Katja Rietdorf, School of Life, Health and Chemical Sciences, The Open University, UK.

Until recently, the response time of illumination systems for Fura-2 imaging have been limited to milliseconds due to mechanical switching of the wavelengths in arc lamp and monochromator systems.  However, the new pE-340fura can be controlled via convenient BNC TTL connections for precise illumination control in as little as 20 microseconds.

Spontaneous Ca2+ events are induced in Mg2+-free HBS. (A) Representative trace from a single hippocampal neuron of Mg2+-free induced Ca2+ events imaged at 0.5 Hz and (B) representative trace from two hippocampal neurons of Mg2+-free induced Ca2+ events imaged at 24.39 Hz.

TINNING, P. W., FRANSSEN, A. J. P.M., HRIDI, S. U., BUSHELL, T. J. and MCCONNELL, G. (2017), A 340/380 nm light-emitting diode illuminator for Fura-2 AM ratiometric Ca2+ imaging of live cells with better than 5 nM precision. Journal of Microscopy. doi:10.1111/jmi.12616

 

Using the new pE-340fura LED Illumination System, less Fura-2 dye can be loaded into the cells whilst still maintaining the same measured calcium concentration and good signal-to-noise ratio.  The reduction in required dye not only improves cell-viability due to reduced dye toxicity, but also results in a cost reduction per experiment.

Comparison of Ca2+ increases obtained from the application of trypsin (100 nM) to tsA-201 cells loaded with different concentrations of Fura-2 AM.

TINNING, P. W., FRANSSEN, A. J. P.M., HRIDI, S. U., BUSHELL, T. J. and MCCONNELL, G. (2017), A 340/380 nm light-emitting diode illuminator for Fura-2 AM ratiometric Ca2+ imaging of live cells with better than 5 nM precision. Journal of Microscopy. doi:10.1111/jmi.12616

 

Work by Sandrine Prost et al., from the University of Edinburgh, has shown that with independent wavelength controllable LED sources, signal-to-noise is dramatically improved over bulb systems and even over some available white wide spectrum LED sources.

High levels of autofluorescence and fast photobleaching of specific fluorescence when illuminating Qdots with Metal Halide.

Prost S et al (2016) Choice of Illumination System & Fluorophore for Multiplex Immunofluorescence on FFPE Tissue Sections. PLoS ONE 11(9): e0162419. doi:10.1371/journal.pone.0162419

 

There are two pE-340fura configuration options:

Direct-fit for connecting to a microscopes – by selecting from a range of microscope adaptors  which covers all current and most older models.  A simple once only adjustment will allow optimisation to the optical path of the microscope.

Liquid Light Guide with a fixed 3mm diameter, liquid light guide.  An optional pE-340fura Universal Collimator can be specified in conjunction with a microscope adaptor if required, containing optics optimised to transmit the 340nm.

pE-300lite

The pE-300lite offers:

CoolLED pE-300lite

Fluorescence Light Source CoolLED-pE-300lite
Simple White Light
Affordable through lab consumables budget

  • 경제적 효율성이 높은 광원 장치 ( 사용 비용이 매우 낮음 )
  • 대기 시간 없이 On / Off를 즉각적으로 할수 있습니다.
  • 광량 조절은 1 % 단위로 1 ~ 100 % 까지 설정이 가능하다.
현미경 부착시 사용되는 아답터의 종류

CoolLED Adaptors

CoolLED Adaptors for Direct-fit to a microscope

  • 다양한 현미경 제조사의 모델에 적합한 아답터를 선택 할 수 있음.
  • 광학 얼라인먼트 조정을 필요로 하지 않습니다.
  • OLYMPUS, NIKON, ZEISS, LEICA 대응가능
Liquid Light Guide type

Universal Collimator-Adaptors
Universal Collimator-Adaptors for CoolLED-pE-300 Series

  • 라이트 가이드를 이용하여 광원을 전달이 가능합니다.  다만 , 이러한 경우에 광량 손실이 발생하므로 이를 고려하여 제품을 구성 하여야 합니다.

CoolLED pE-300white

CoolLED pE-300 시리즈 스펙트럼 특성표

CoolLED pE-300white Spectrum

  • 구형 모델에 비하여 2배의 강해진 출력으로 샘플을 자극
  • DAPI, CFP, Aqua, FITC, TRITC, TxRed, Cy5 등의 다양한  형광염색에서 사용됩니다.
수명이 매우 길고 출력이 항상 일정하여  안정적인 광원

예상 수명이 25,000 시간을 초과하는  장시간 수명을 가지고 있기 때문에  소모품 교체 없이  오랜기간 사용이 가능하고, 추가적인 운영 비용없이 안전하고 편리한 조명 시스템입니다.

    • No bulb replacement or ongoing consumables

pE-100wht

The pE-100wht offers:

CoolLED pE-100wht

  • Replaces 100W halogen lamp housing on most current and older microscopes – quick & easy exchange
  • No unwanted UV – reduced risk of eye damage
  • Instant on/off  – no shutters required, no warm up or cool down
  • Simple to fit, simple to use – no need to align
  • Stable & repeatable – reliable and consistent results
  • Wide range of microscope adaptors – fits most microscopes
  • Precise intensity control in 1% steps (0-100%) – no ND filters required
  • Excellent uniformity over field of view – fixed and stable, no alignment necessary
  • Long lifetime – expected to exceed 50,000 hours of operating time

 

 

Polarization

전용 편광 현미경

Polarization Microscopy

 

편광현미경의 역사 및 용도

19세기 중순 경 개발되어짐.
초기에는 암석과 광물의 연구에 주로 사용되어졌으나, 점차로 그 용도가 넓어져서 의약품, 공업제품 등 산업 전반에 걸쳐 이용분야가 확대되었음.

편광현미경의 사용 목적

샘플의 광학적 성질의 조사하여 구성하는 물질이 무엇으로 이루어졌는지 동정(同定) 하기 위해 사용 됨.

광학적 성질에 의한 샘플의 분류

광학적등방체 ( (Isotropic material )

: 샘플에 빛이 통과 할때 어떠한 방향으로 빛이 진행하더라도 모든 방향에 대하여 동일한 광학적 영향을 준다.(복굴절 하지 않는다.)

예: 유리 등

광학적이방체 ( Anisotropic material )

: 샘플에 빛이 통과 할때 빛이 진행하는 방향(각도)에 따라 다양한 복굴절을 한다.

일축성 결정_이방체 (uniaxial anisotropic body)
: 빛이 진행 할 때 복굴절하지 않는 광축을 하나만 가지고 있다.
예: 방해석, 석영 등

이축성 결정_이방체 (biaxial anisotropic body)
: 빛이 진행 할 때 복굴절하지 않는 광축을 두개 가지고 있다.
 예: 운모, 장석, 각섬석, 휘석, 감람석 등


전용 편광 현미경의 구성품 (일부)

Compensator에 대한 구성 및 설명은 포함되어 있지 않습니다.

투과형 간이편광현미경 반사형 형광현미경
투과형 편광 & 반사형 형광 현미경 (전용편광현미경의 사진이 아닙니다.)
이 장비는 투과형 편광현미경에 Tint plate가 추가된 현미경 입니다.
전용 편광현미경은 스테이지와 검광자의 회전각을 각각 읽을 수 있어야 합니다.

The First Order (Full wave) Retardation Plate

분류일반 명칭모델명
OLYMPUS JAPAN편광 전용현미경λ필터U-TP530

Optical path differences ranging from a fraction of a wavelength up to several wavelengths can be readily estimated using a first order (or full wave) retardation plate. This versatile tool is known by several names, including a red plate, red-I (red-one) plate, lambda (λ) plate, gypsum plate, selenite plate, sensitive violet, or simply a color tint plate, and adds a fixed optical path difference between 530 and 560 nanometers (depending upon the manufacturer) to every wavefront in the field. The first order retardation plate is a standard accessory that is frequently utilized to determine the optical sign (positive or negative) of a birefringent specimen in polarized light microscopy. In addition, the retardation plate is also useful for enhancing contrast in weakly birefringent specimens.

The elegantly simple anatomy of a first order retardation plate is presented in Figure 1 for a typical commercial unit. Retardation materials employed in construction of the plate vary according to the application, but usually consist of either an optical mineral thin section (such as gypsum/selenite, quartz, calcite, or mica) or a highly aligned birefringent linear organic polymer sandwiched between two isotropic optically flat glass plates. Regardless of the material used in producing retardation, the optical path difference (usually inscribed on the retardation plate frame) and optical axis orientation of the birefringent retarding material must be carefully controlled so that the plate can add a known retardation value to both the high and low refractive index azimuths. As illustrated in Figure 1, the birefringent retardation material is positioned in a rectangular frame that is inserted into the microscope optical pathway at a 45-degree angle with respect to the transmission orientations of the polarizer and analyzer. The direction of the slow (high refractive index) axis of the wavefront ellipsoid is indicated on the retardation plate frame as a double-headed arrow accompanied by the Greek symbol for “gamma” (γ). In most cases, the slow axis orientation is perpendicular to the long dimension of the retardation plate frame, although this fact should be verified before attempting to use the instrument. Modern first order retardation plates are built in a frame having standardized DIN dimensions (6 × 20 millimeters) that will enable their use in a variety of microscopes.

The first order retardation plate is designed to introduce a relative retardation of exactly one wavelength (in the green or 550 nanometer region) between the ordinary and extraordinary wavefronts passing through the plate when the birefringent retardation material is illuminated by linearly polarized light at a 45-degree incident angle to the index ellipsoid.

As a result, green wavelengths emerge from the retardation plate crystal still linearly polarized and having the same orientation as when they entered the retardation material (parallel to the polarizer). These wavelengths are perpendicular to the analyzer, thus are absorbed and do not pass through.

The orthogonal wavefronts of all other wavelengths will experience some degree of retardation (less than a full wavelength) and will emerge from the retardation plate having varying degrees of elliptical polarization. These wavefronts are therefore able to pass a component vector through the analyzer. Subtracting the green wavelengths (blocked by the analyzer) from white light yields bright magenta-red, which results from a combination of all visible light spectral colors when the green wavelength band is missing. The magenta color observed in the microscope when a first order retardation plate is inserted into the optical train is a direct result of the events described above and is the origin for much of the common nomenclature describing this important qualitative tool.

The behavior of a quartz first order retardation plate in polarized white light, symbolized by a combination of red, green, and blue wavefronts, is reviewed in Figure 2. Without a specimen in the optical pathway (Figure 2(a)), the retardation plate induces an elliptical polarization vector to the red and blue waves as they pass through, but the green light travels through the quartz crystal as a linearly polarized wavefront that is absorbed by the analyzer. As a result, only a component of the red and blue waves is able to pass through the analyzer to produce a spectrum of white light minus the green wavelengths, which is seen in the microscope as a bright magenta background.

When a birefringent specimen with a wavefront ellipsoid parallel to the retardation plate is inserted into the optical pathway (Figure 2(b)), the relative retardation of orthogonal wavefronts is increased across the viewfield so that the color (red) now exhibiting linear polarized behavior is shifted to longer wavelengths. The blue and green wavelengths are elliptically polarized and interfere at the intermediate image plane to form a hue similar to second order blue (an addition color). Rotating the specimen by 90 degrees alters the relationship between the wavefront ellipsoids (Figure 2(c)) so that they are now perpendicular. In this case, the relative retardation of the orthogonal wavefronts is decreased across the viewfield and the shorter (blue) wavelengths emerge as linearly polarized light (only to be absorbed by the analyzer). Elliptically polarized green and red wavelengths ultimately recombine to form a first order yellow (subtraction) interference color.

Inserting a first order retardation plate into the optical path of a polarized light microscope introduces a dramatic display of interference colors in thin, birefringent specimens that is not only aesthetically beautiful, but also highly useful as an indicator of several optical properties. Quantitative evaluations of relative retardation and determinations of the index ellipsoid orientation are readily achieved with a first order retardation plate. In geological and materials investigations, first order retardation plates are often employed to determine specimen thickness and to identify birefringent crystalline and polymeric materials. The tool is capable of measuring retardations with an accuracy of approximately 2 nanometers in specimens that have relatively low (one-third of a wavelength) optical path differences.

With simple uniaxial birefringent materials, the first order retardation plate can be employed to determine whether the extraordinary wavefront is slower or faster than the ordinary wavefront and thus determine the sign of birefringence. If the extraordinary wavefront is slower than the ordinary wavefront, the specimen displays positive birefringence. Conversely, a negative sign of birefringence is observed in specimens that have an ordinary wavefront that is slower than the extraordinary wavefront. First order retardation plates are ideal for use with specimens that have very low order (or only gray-level) interference colors when observed in the polarized light microscope. Before attempting an analysis of birefringence, specimens must first be oriented with the index ellipse in a diagonal position (45-degree angle) with respect to the microscope polarizer and analyzer. The two vibration (ordinary and extraordinary) azimuths will then run Northeast-Southwest and Northwest-Southeast, whereas the polarizer is oriented East-West and the analyzer North-South (as seen in the microscope viewfield).

After the specimen has been properly oriented, the colors appearing in the microscope eyepieces represent interference that is generated by the additive effects of the specimen and the first order retardation plate. If the specimen slow vibration axis is superimposed over the corresponding axis of the retardation plate, the additive retardation effects will result in higher order interference colors (termed theadditive position). However, if the fast axis of the specimen is parallel to the slow axis of the retardation plate, the relative retardation will be decreased and result in lower order interference colors (thesubtractive position). As an example, in a relatively thin, elongated birefringent crystal that displays only first order gray intensities under crossed polarized illumination, addition of a first order retardation plate to the optical train will result in quadrants that display blue and yellow interference colors, depending upon the orientation of the crystal. In positive crystals, yellow interference colors are observed when the crystal is oriented Southeast to Northwest, while blue colors result from rotating the crystal by 90 degrees (into a Northeast-Southwest direction). Likewise, negative crystals exhibit yellow colors when oriented Northeast-Southwest and blue colors when oriented Southeast-Northwest.

This effect is illustrated with a pair of synthetic acetate fibers in Figures 3(a) and 3(b). Without a first order retardation plate in the optical path, the fibers appear birefringent with a 140-nanometer first order gray intensity superimposed on a jet black background (not illustrated). When the long axis of the synthetic acetate is oriented Northwest-Southeast and a first order retardation plate inserted into the microscope tube, the fibers acquire a first order yellow hue on a magenta background (Figure 3(a)). Rotating the microscope stage by 90 degrees (Northeast-Southwest) alters the interference color to second order blue (Figure 3(b)). From these results, the optical sign of birefringence for the acetate fibers is judged to be positive.

The sign of birefringence can also be readily determined using a first order retardation plate coupled to observation of conoscopic interference patterns with a Bertrand lens (see Figures 3(c) and 3(d)). When a Bertrand lens is inserted into the optical train of a polarized light microscope (between the objective rear aperture and the observation tubes), the conoscopic image of a uniaxial quartz crystal appears as a series of concentric rings having increasing orders of interference fringes from the center to the periphery, which are superimposed on a darkened Maltese cross (Figure 3(c)). Inserting a first order retardation plate into the microscope nosepiece or intermediate tube divides the image into quadrants that display higher order interference colors (Figure 3(d)). If the first and third quadrants (see Figure 3(d)) of the conoscopic image produce additive interference colors (blue and higher), the crystal is positively birefringent. However, if the second and fourth quadrants add to higher interference colors, the crystal is negatively birefringent. The conoscopic image of quartz (Figure 3(d)) reveals that the optical sign of birefringence is positive in quartz having this crystalline lattice structure. Biaxial crystals can also be examined conoscopically to determine their sign of birefringence.

First order retardation plates are also efficient at increasing contrast in very weakly birefringent specimens that are difficult or impossible to detect using crossed polarized illumination alone. Many of the common birefringent biological assemblies examined in polarized light, such as cell walls, starch granules, lignin, microtubules, and actin filaments, fall into this category. An excellent example is provided by a thin section of human tongue, which displays several birefringent structures (Figures 3(e) and 3(f)) of varying intensity. In crossed polarized illumination (Figure 3(e)), weakly birefringent condensed formations at the edge of the tissue are difficult to image and striated muscle tissue supporting the structures is absent. In contrast, when a first order retardation plate is added to the optical train, the structure of all birefringent features becomes readily apparent (Figure 3(f)) and the higher order (blue and yellow) interference colors provide an indication of the optical sign.


The Quarter Wavelength Retardation Plate

분류일반 명칭모델명
OLYMPUS JAPAN편광 전용현미경1/4λ필터U-TP137

The quarter wavelength retardation plate is a common optical accessory for polarized light microscopy that operates by introducing a relative phase shift of 90 degrees between the orthogonal wavefronts (ordinary and extraordinary) passing through when the plate is illuminated with linearly polarized light. A phase shift of 90 degrees between the ordinary and extraordinary components converts the incident linear polarized light vibrations into either elliptical or circularly polarized light. Quarter wavelength retardation plates are useful for the qualitative analysis of conoscopic and orthoscopic images, and for the assessment of optical path differences in birefringent specimens.

The simple anatomy of a quarter wavelength retardation plate is presented in Figure 1 for a typical commercial unit. Retardation materials employed in construction of the plate vary according to the application, but usually consist of either an optical mineral thin section (such as quartz or mica) or a highly aligned birefringent linear organic polymer sandwiched between two isotropic optically flat glass plates. Regardless of the material used in producing retardation, the optical path difference (usually inscribed on the retardation plate frame) and optical axis orientation of the birefringent retarding material must be carefully controlled so that the plate can add a known retardation value to both the high and low refractive index azimuths of orthogonal wavefronts. As illustrated in Figure 1, the birefringent retardation material is positioned in the window of a rectangular frame that is inserted into the microscope optical pathway at a 45-degree angle with respect to the transmission orientations of the polarizer and analyzer. The direction of the slow (high refractive index) axis of the wavefront ellipsoid is indicated on the retardation plate frame as a double-headed arrow accompanied by the Greek symbol for “gamma” (γ). In most cases, the slow axis orientation is perpendicular to the long dimension of the retardation plate frame, although this fact should be verified before attempting to use the instrument. Modern quarter wavelength retardation plates are built in a frame having standardized DIN dimensions (6 × 20 millimeters) that will enable their use in a variety of microscopes.

The quarter wavelength retardation plate is designed to introduce a relative retardation of exactly one-quarter wavelength (in the green or 550 nanometer region), or 90 degrees, between the ordinary and extraordinary wavefronts passing through the plate when the birefringent retardation material is illuminated by linearly polarized light at a 45-degree incident angle to the index ellipsoid, as illustrated in Figure 2. The resulting phase shift converts the linear input wavefront to a circularly polarized output wavefront. This action occurs because the orthogonal ordinary and extraordinary components have equal amplitudes when linear light oriented at a 45-degree angle to the principal (the fast or slow) axes is incident on a quarter wavelength retardation plate. In a similar manner, the quarter wavelength plate will convert an incoming circularly polarized wavefront into a linearly polarized wavefront.

Commercial quarter wavelength retardation plates are specified by their linear retardation, which is 137 nanometers for the device illustrated in Figure 1 that is designed to operate in light having a principal wavelength of 548 nanometers (in the green region). In polarized light microscopy applications, the quarter wavelength plate is utilized in a similar manner to the full wave retardation plate in order to determine whether the combination of a weakly birefringent specimen and the plate (oriented at a 45-degree angle to the polarizer and analyzer) yield higher or lower order interference colors. However, the quarter wavelength plate has been largely supplanted by the full wave retardation plate due to the superior sensitivity of the latter in producing color changes that can be readily observed. In cases where birefringent specimens display higher order interference colors between crossed polarizers without a retardation plate, then the quarter wavelength plate can often be used to advantage over the full wave plate to determine optical path differences.

This concept is illustrated in Figures 3(a) and 3(b) for a polished thin section of tactic skarn, which contains inclusions that exhibit first and second order interference colors in polarized light without the presence of a retardation plate or compensator. When a first order retardation plate is employed to determine the optical sign of this birefringent ore, the interference colors are shifted up the Michel-Levy chart by a single wavelength and can lead to confusion during quantitative analysis. Conversely, using a quarter wavelength plate instead produces the customary first order yellow for the fast optical axis (Figure 3(a)) and second order blue hue for the slow axis (Figure 3(b)), allowing for easier identification of the optical properties.

The primary use for quarter wavelength retardation plates is to determine the optical sign of birefringence from interference figures observed in conoscopic mode with a Bertrand lens (Figures 3(c) and 3(d)). Insertion of a quarter wavelength retardation plate resolves the center of a uniaxial interference figure (Figure 3(c)) into two dark spots (Figure 3(d)). If the dark spots are positioned at right angles to the slow vibration axis of the compensator crystal (in quadrants two and four; Figure 3(d)), then the sign of birefringence for the crystal is positive. Conversely, if the dark spots are positioned parallel to the compensator crystal slow axis (in quadrants one and three; Figure 3(d)), the crystal has a negative sign of birefringence. Note that other rings in the interference pattern are translated either towards the center or the periphery of the pattern according to the optical sign. The interference pattern in Figure 3(c) was generated conoscopically using a polished thin section of the mineral lamproite, which exhibits negative birefringence. A similar technique can be employed to determine the optical sign of birefringence for biaxial crystals.

The extinction bands in polarized light images can be eliminated for image analysis purposes by inserting crossed quarter wavelength retardation plates into the microscope optical path with the specimen sandwiched between the two plates. In effect, the retardation introduced by the first quarter wavelength plate is precisely cancelled by the second, so that light reaching the analyzer contains only the retardation introduced by the specimen itself. In practice, one of the retardation plates is inserted into the nosepiece or intermediate tube slot with the slow vibration axis oriented Northeast-Southwest (by convention in modern microscopes). The second plate must be placed between the polarizer and the specimen (usually in or very near the condenser) with the slow axis oriented Northwest-Southeast. The two plates should be fabricated from the same material in order to completely eliminate extinction bands. If the two plates are accurately aligned, a minimum change of polarization colors will be observed in birefringent specimens as they are rotated through 360 degrees with the microscope circular stage. Images of purified riboflavin (Vitamin B2) crystallites in polarized light (Figure 3(e)) alone, and with quarter wavelength retardation plates inserted beneath the stage and above the objective rear aperture are illustrated in Figures 3(e) and 3(f), respectively. Note that the extinction regions of the spherulitic crystallite present in Figure 3(e) have been eliminated by the application of two quarter wavelength plates (Figure 3(f)), which more clearly defines the texture.

In summary, the quarter wavelength retardation plate is capable of detecting optical path differences of (plus or minus) one-half wavelength by rotating the stage through 90 degrees. In this regard, the plate has a sensitivity range lying between the Bräce-Köhler and quartz wedge compensators and overlaps with the de Sénarmont compensator. Unlike many of the adjustable compensators, the quarter wavelength retardation plate can be effectively used in white light, but the most accurate results are obtained when the plate is coupled to the wavelength for which the crystal was prepared (for example, 548 nanometer green light for a 137 nanometer plate). The retardation plate can also be used to produce circularly polarized light by inserting it into the optical path above the polarizer.

JNO-WICD-02

JNO-WICD-02

Filter Holder for BX50 WI

(OLYMPUS  – 32BP775)

45㎜ holder for 32㎜ filter

 

  •  45㎜ 필터용 위치에 32㎜ 필터를 사용할 수 있도록 만든  홀더
  • 여러개의 필터를 중첩하여 사용 가능함.
  • BX50-WI (Olympus)  광학 유닛 업그레이드시에 JNO-DICD-01과 같이 사용되어 지며,  32BP775 설치시에 필요한 홀더임.
45㎜ holder for 32㎜ filter
Filter holder for transmitted light (OLYMPUS BX)

 

Tomoro Scope Eye Auto

Tomoro Scope Eye Auto

 

제품소개

TOMORO ScopeEye Auto는 기존의 TOMORO ScopeEye에 자동 입도 분석 (Particle analysis) 기능이 추가된 범용 영상 분석 소프트웨어 입니다.

TOMORO ScopeEYe Auto는 기존의 불편한 입도 분석 (Particle analysis) 절차를 단순화 시켰음에도 더욱 자세한 분석 결과를 도출 할 수 있도록 설계되었습니다.

TOMORO ScopeEye Auto로 기존에 불가능했던 강력한 입도 분석(Particel analysis)을 경험해 보십시오.


Segmentation Method

* 30여가지의 Measure Items
* 개별적인 개체들에 대한 측정 아이템의 추가 삭제 가능
* 항목 선택에 관련한 사용자 지정값의 저장 및 불러오기 기능
* 특성에 따라 그룹화된 측정 아이템

■ Color Picker를 이용한 Segmentation

아래의 도구를 이용하여 향상된 영상 분할을 수행.
*Color Picker
*Magicwand
*Select Object
*Select Total Object
*Set from Histogram

■ Histogram을 이용한 Segmentation(영상 분할)

*Histogram Zoom control
*Low / High Bound control을 이용한 수동 구간선택.
*Low / High Bound display : 스핀 컨트롤을 이용한 미세 조정
*자동 Dark / Bright 영역검출
*선택된 영역에 대해 segmentation(영상 분할) 을 수행합니다.

■ CP Edition

* 선택된 객체의 간편한 분할 및 결합 기능


Measure Items

■ General

■ Diameter

■ Radius

■ MER

■ Global Analysis

 

Tomoro Scope Eye 3.6

Tomoro Scope Eye 3.6

 

TOMORO ScopeEye는 순수 국내 기술로 개발된 영상 분석 소프트웨어(Image Analyzer)입니다.

기존의 외국 제품만을 사용할 수 밖에 없었던 영상 분석 소프트웨어를 국산화 하였을 뿐 아니라, 한국의 사용자의 생각과 요구를 반영하여 독창적인 한국인을 위한 영상 분석 소프트웨어로 새롭게 탄생하였습니다.

TOMORO ScopeEye의 직관적인 인터페이스는 원하는 분석 및 측정을 가장 쉽고 빠르게 획득할 수 있도록 도와 드릴 것입니다.


Normal Function

Capture(Multi Frame Capture) * 캡쳐 보드를 이용한 Analog CCD 카메라 영상 획득 가능 * 영상획득을 위한 다양한 인터페이스 지원(WDM, TWAIN등등) * 스크롤바를 이용한 실시간 이미지의 Zoom in, Zoom out 가능 * Multi Frame Capture : 일정시간 간격으로 영상을 동영상으로 저장 가능

Annotation

* 이미지 위에 문자, 선, 도형등을 그려 넣어 이미지의 부가적인 설명이 가능                                                                                                                                       * 8가지 Annotation 항목 지원

Navigation Display

* 이미지의 현재 위치 및 영역을 표시해 주는 Navigation Window         * 현재 커서 위치의 이미지를 부분적으로 확대해 주는 Zoom Window * 스크롤 바를 이용한 이미지의 확대 축소 가능 이런 노멀


Normal Function 2

File Handling

▶ JPEG, BMP,TIF,IMP(ScopeEye 자체 파일 포맷)등 다양한 파일 포맷 지원
▶불러오기 메뉴 선택시 이미지의 미리보기 기능 지원
▶ Printer
– Table기능을 이용 여러 이미지 편집 출력 가능
( 이미지 출력시 상,하 마진율 사용자 지정 가능)

Thumbnail Bar

▶ 현재 이미지의 목록을 썸네일로 표시하여 이미지간의 이동 및 관리가 용이

▶ 이미지의 정보 및 파일 이름이 표시

▶작업 중 사용된 이미지는 신속하게 다시 열 수있음

AOI(Area of Interest)


2D Measurement

 

Live Measurement

▶ 20여가지가 넘는 다양한 측정 항목 지원

▶ 사용자 중심적으로 만들어진 측정 아이콘

▶ 다양한 색으로 측정 개체를 표시할 수 있는 Auto-color rotation 기능 지원

▶ 측정 데이터의 폰트 크기 및 색 등을 이미지 환경에 맞게 변경 가능

▶ 2D Measurement의 모든 측정 항목을 Live image상에서도 수행 가능

Measurement Tool

Measurement Report


Multi Focus

◆여러장의 이미지를 캡쳐한 장면

◆Multi Focusing한 선명한 이미지

*고배율 관찰시 Sample의 심도차이로 인해 뚜렷한 영상을얻기가 어렵습니다.
이때 세 프레임 이상의 서로다른 초점의 영상을 획득한 후 multi-Fouse기능을 적용하여 위 아래가 전부 초점이 맞은 선명한 영상을 얻을 수 있습니다.


Imaging Tilting

▶ 타일링만을 위한 넓은 작업 Canvas제공
▶ Live 영상에서의 타일링 가능
▶ 고배율 촬영시 협소해진 관찰 영역의 확대 기능
▶ 이미지들의 OverLay된 부분을 자동으로 탐지하여 결합하는 자동 붙이기 기능 지원
▶ 하나의 이미지에서 고배율의 정밀 관찰과 전체 이미지 관찰이 가능


3D Display

▶ 이미지의 휘도레벨에 따른 3차원 이미지 생성 기능
▶ 3차원 이미지의 의사칼라 표현 기능 및 Pattern Color 표현 기능
▶ 3차원 이미지내 휘도 레벨 표시 기능
▶ 3차원 이미지의 각도, 빛의 각도, 높이조절 등 Rendering 기능
▶ 실시간 데이터 갱신


Caliper

◆Gear의 톱니바퀴 부분의 간격 측정

◆Grain 영역의 간격 측정

▶ 이미지내 개체의 경계 자동 검출 기능 ▶ 경계간의 간격 자동 측정 ▶ 실시간 데이터 측정 ▶ 데이터의 엑셀 등 SpreadSheet로의 출력 ▶ Data Collector를 이용한 여러 이미지간의 데이터 수집 기능


Auto Calibration

▶ 사용자의 편리성과 정확한 측도 설정을 위한 자동 측도 설정

▶ 실체 현미경이나 영상 현미경의 영상분석에 적합한 자동 측도 설정 기능

▶ 설정된 Calibration 환경값의 백업 및 복구 기능

▶ 우수한 반복 정밀도로 측정 데이터의 신뢰성 향상


Split & Merge planes

* Split RGB : 이미지의 Red, Green, Blue Plane을 추출하여 3개의 이미지로 분리

* Split HSI : 이미지의 Hue, Saturation, Intensity Plane을 추출하여 3개의 이미지로 분리

* Merge Planes : Splite Planes에 의해 추출된 Plane들을 하나의 True Color 이미지로 생성


Color 변환

▶ Pseudo Color(의사 색변환)

▪ 캡쳐된 그레이 영상을 사용자가 정해놓은 시간 간격에 맞추어서 다양한 색깔로 보여준다.

▪ 변화되는 이미지를 사용자가 임의적으로 선택 가능

▪ Rainbow, Solaris, Thermal, Red to Blue, Blue to Red 등 다양항 색 변환 모드 제공

▶ RGB to Gray

– 컬러의 영상을 8비트의 그레이 스케일로 전환
– Color의 개념이 필요치 않은 Auto Counting의 전처리로 사용된다.


Image Enhancement

▶ Auto contrast
– 캡쳐된 이미지의 최상의 대비값을 자동으로 찾아준다.

▶ Invert
– 낮은 휘도를 높게, 높은 휘도를 낮게 변경하여 휘도의 역상을 만듭니다.

▶ Auto Level
– 각각의 RGB 플랜에 대하여 최적의 Contrast값을 부여합니다.

▶ Brightness Contrast
– 캡쳐된 이미지에 Bright 및 Contrast 값을 조절합니다

▶ Threshold
– 이미지를 임의의 임계값(Threshold)을 기준으로 Black & White의 이진이미지로 변환


Image Filter

▶ Morphological : 형태적으로 영상내의 물체의 형태를 표현
▶ Edge : 입력 이미지의 경계선을 검출
▶ Enhancement
– 원본 이미지를 필터링하여 향상된 이미지를 얻거나 원하는 이미지로 변환 가능
– 필터링 효과 적용전 미리보기 기능
▶ 사용자 정의 필터 : 사용자가 직접 필터를 만든 후 필요시마다 적용 가능


Database Manager

▶Image Database
– 하드 디스크에 산재해 있는 이미지들의 가상 폴더 관리 기능
– 가승 디렉토리의 그룹화
– 단일 및 다중 검색어 지원으로 편리해진 이미지 검색
– 사용자 정의의 커스텀 데이터 필드 지정
– 편리한 이미지 미리보기 기능으로 다양한 이미지 출력
– 슬라이드 쇼 기능
– 패스워드 지정으로 보안 기능 수행
– 임의의 사용자 정의 데이터 필드 지정


Specification

File Handling
* 이미지 파일 포맷: BMP, JPEG, TIFF, IMP etc
* 그 외의 파일 포맷: EXCEL(*.xls), Text file(*.txt)
* 8bit Gray, 24bit Color Image Support

Imaging
* 다양한 프레임 그레버 지원
:DT313X, DT315X, Flashbus MV-Lite, Flashpoint, WDM base Frame Grabber etc
* TWAIN 인터페이스 지원으로 디지털 카메라 및 스케너 등의 장비 지원
* 크기를 변경하여 영상을 획득 가능

Image handling
* 오버레이 상에 이동 가능한 스케일 바 출력
* Image Navigation Window를 이용하여 큰 이미지나 확대, 축소시의 위치 이동이 용이
* 툴바, 키보드, 마우스 휠버튼을 이용한 Image의 Zoom In/Out
* 조합 가능항 5가지 Type의 Grid

Image Operations
* 포함된 필터들:
-개선:Hipass 3X3, Hipass 5X%, Gaussian 5X5, Median, Sharpen, Min, Max
-경계:Roberts, Sobel, Priwitt, Laplacian 3X3, Laplacian 5X5
-모토로지컬:Erode, Dilate, Open, Close
-사용자정의:User Defined filter 3X3 to 5X5
*칼라변환:RGB to Gray, Gray to RGB, RGB to HSI, HSI to RGB
*영상개선:Invert, Auto Contrast, Auto level, Histogram equalize, Remove noise, Brightness & Contrast Control, Threshold
*Geometric 변환: Resize, Rotate, Filp Vertical, Flip Horizontal, Flip Both

Interactive Measurement(2D Measurement)
* 20가지 Interactive measurement 항목
* 선, 측정 데이터 표시의 변경 및 속성 변경
* Vector 방식의 측정 항목 처리로 확대 시에도 선명한 측정 개체 표시 가능
* Microsoft Excel로 DDE를 통한 데이터 및 통계값 전송

Live Measurement
* 라이브 영상 획득 모드 상에서 Interactive Measurement 수행 가능
* 이미지 획득시 모든 측정 항목도 함께 획득

Auto Measurement(Auto counting버젼에 한함)
* Color Picker 기반의 직관적인 입자 검출
* 히스토그램 기반의 지능적인 입자 검출
* Magic Wand에 의한 지능적인 입자 검출
* Undo/Redo 기능 지원
* 5가지 분류 항목의 30여가지의 측정 항목: General, Mer, Diameter, Radius, Global analysis
* 각 측정 항목의 범위 설정 가능

Others Function
* Plug-in module 설계로 추후 특정 모듈이 추가 및 원하는 기능 확장이 용이
* 문맥 감지 도움말로 상황에 맞는 도움말 제시

Multi Focusing
* 초점이 맞지 않는 이미지들을 초점 심도가 맞는 부분만을 조합하여 깨끗한 하나의 다중 초점 영상을 획득

Image Tiling
* 고배율로 갈수록 관찰 가능한 영역이 협소해지는 현상이 발생
* Image Tiling 기능을 사용하여 여러개의 협소한 관찰 영역 이미지들을 하나의 큰 이미지로 조합 가능
* 저장된 이미지 파일 및 Live 영상 획득으로 타일링 기능 수행 가능

Caliper
* 이미지내 개체의 경계 자동 검출 기능
* Derivative, pattern Match 등의 정확한 경계 검출 방법
* 경계간의 간격 자동 측정

3D Display
* 이미지의 휘도 레벨에 따른 3차원 이미지 생성 기능
* 3차원 이미지의 의사칼라 표현 기능 및 pattern color 표현 기능
* 3차원 이미지의 각도, 빛의 각도, 높이 조절 등 Rendering 기능

Split planes & Merge planes
* RGB, HIS color Component 분리
* Red, Green, Blue Plane 조합
* Hue, Intensity, Saturation Plane을 조합

Auto Calibration
* 실체 현미경이나 영상 현미경 분석에 적합한 자동 측도 설정 기능
* 우수한 반복 정밀도에 의한 측정 데이터 신뢰성
* 현미경 상에서 고배율(500배 이상)에서 척도 설정의 신뢰성 향상

Pseudo Coloring
* Gray 이미지에 대해서 의사 칼라링 가능
* 음영의 경계 부분을 가시적으로 표시 가능
* 10여 가지의 LUT 지원 및 임의 LUT 생성 기능

User Interface
* 도킹 가능한 컴포넌트 윈도우 구성으로 사용자가 편리한 작업 환경을 구축 가능
* Measure / Annotation, Navigation / Zoom, Thurmbnail bar, Measurement Report
* 정밀 측정을 위한 Zoom 다이얼 로그 박스
* 관심 이미지 영역 이동을 위한 Navigation 윈도우

Database
* 사용자 정의의 커스텀 데이터 필드 지정 가능
* New, Open, Save, Save as, Close Database
* 인쇄 미리보기와 이미지 인쇄를 위한 위치 지정
* 이미지 검색이 용이
* 썸네일 크기로 이미지 조절
* 시간 조절 가능한 슬라이드 쇼 가능

Report
* 이미지와 측정 데이터를 Microsoft Excel로 전송

Others Function
* Plug-in module 설계로 추후 특정 모듈의 추가 및 원하는 기능 확장이 용이
* 문맥 감지 도움말로 상황에 맞는 도움말을 제시

 

Download Dongle Driver for Scope Eye 3.6

BX53-P

BX53-P 정립 현미경

편광 현미경

Olympus BX53-P 편광 현미경은 UIS2의 무한보정 광학계와 독자적인 광학 설계의 조합을 편광 어플리케이션에서 뛰어난 성능을 제공합니다. 폭 넓은 컴펜세이터의 라인업은 BX53-P를 어떤 분야에서의 관찰과 측정실험도 가능하도록 만들어줍니다.

UIS2 광학계는 뛰어난 확장성을 제공합니다.

무한 보정의 장점을 최대화하여, UIS2 광학계는 광학 현미경 성능의 저하를 막고, 분석판(Analyzer), 틴트 플레이트(Tint Plate)나 컴펜세이터(Compensator)가 광로 상에 있어도 배율 변화가 없습니다. 높은 수준의 시스템 유연성 유지를 위해, BX53-P는 BX3 시리즈 시스템 현미경의 중간 연결 장치(Intermediate attachment), 카메라 및 이미징 시스템과도 호환됩니다.


편광 특성의 개선

ACHN-P와 UPLFLN-P에 사용된 정교한 디자인과 제조 기술은 내부 변형을 줄여 줍니다. BX53-P 편광 현미경은 EF 값이 높은 Filter가 적용된 편광판(Polarizer)과 분석판(Analyzer)를 사용하여 영상의 대비가 뛰어납니다. 연구의 다양성과 어플리케이션의 요구들을 충족하기 위한 범용 UPLFLN-P 시리즈 대물렌즈는 미분간섭(Nomarski DIC) 및 형광현미경, 편광 관찰에 이르기까지 많은 관찰법들을 폭넓게 수용하도록 설계되어왔습니다.
* 흡광인자(EF_Extinction Factor)는 평행과 교차편광 필터 사이의 휘도비(Brightness Ratio)를 의미합니다. 흡광인자의 값이 클수록 흡광도(Extinction)가 높습니다.


컴펜세이터(Compensator)의 폭넓은 범위

6종류의 컴펜세이터(Compensator)를 BX53-P 현미경에 사용하여 0 ~ 20λ 내의 위상차 정도(Retardation Level)를 측정할 수 있습니다. 직접 입출력 방식으로 측정이 용이합니다. 더욱 높은 영상 대비는 모든 시야 범위 내에서의 위상차 정도(Retardation Level)를 조절하는 Senarmont* 또는 Brace-Koehler 컴펜세이터를 사용하여 얻을 수 있습니다.
* 단색성 녹색 필터인 IF546 또는 IF550와 사용할 수 있습니다.


일반관찰 및 편광관찰에서의 선명한 영상

U-CPA 편광(Conoscopic) 관찰 장치 부착으로 두 관찰법 사이의 전환이 쉽고 빠릅니다. 편광(Conoscopic) 영상의 초점 조절은 쉽고 정확합니다. 버트랜드 시야 조리개(Bertrand field stop)로 선명하고 일정한 편광(Conoscopic) 영상을 얻을 수 있습니다.


튼튼하고 정확한 회전재물대

회전재물대에 부착된 회전- 센터링 기구는 표본을 부드럽게 회전할 수 있게 만들어줍니다. 추가적으로, 정확한 측정을 위해 매 45도 마다 클릭 스톱(Click-stop) 장치가 있습니다. 이중 기계식 재물대(Dual-Mechanical Stage)를 추가하는 옵션을 통해 더욱더 정교한 XY 축 이동이 가능합니다.